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pUC-T TA快速連接試劑盒(含載體,連接酶)說明書
pUC-T Quick Ligation Kit
pUC-T TA快速連接試劑盒(含載體,連接酶)
目錄號:YJ2591
保存條件:-20℃保存。
組分說明
Cat. No. YJ2591
Size 20次
pUC-T(50 ng/μl) 20 μl
Conctrol Insert (50 ng/μl) 10 μl
Quick T4 DNA Ligase 20 μl
2×Quick Ligation Reaction Buffer 120 μl
本產(chǎn)品僅供科研使用,請勿用于臨床診斷及其他用途
產(chǎn)品簡介
pUC-T TA載體是一種克隆PCR產(chǎn)物的載體,它是由pUC18載體在EcoR V
酶切位點處切開,在兩側(cè)的3′端添加T而成。由于大部分耐熱聚合酶反應(yīng)時都會在 PCR
產(chǎn)物的3′端添加一個A,它可以與pUC-T 3′端的T互補連接,因此可大大提高PCR產(chǎn)物的連接和克隆效率。
試劑盒中配備率的T4 DNA Ligase和為快速DNA連接優(yōu)化的2×Quick Ligation
Reaction Buffer。連接效率相當(dāng)于用T4 DNA Ligase 進行常規(guī)連接1小時。帶有插入片
段的重組子可根據(jù)α互補原理,進行藍白斑篩選,判斷載體中有無外源基因的插入。克
隆后可以用BcaBEST Sequencing Primers和 M13通用引物對PCR產(chǎn)物進行測序。
注意事項
1.Insert DNA 要求
1)連接使用的PCR片段3’末端應(yīng)帶有“A”尾。有些高保真DNA聚合酶,如我公司的 Pfu擴增的PCR產(chǎn)物是平滑末端,可使用加A試劑盒加上A尾后,再進行T載體克隆。
2)PCR產(chǎn)物建議進行切膠回收純化后再進行T載體克隆,以免PCR產(chǎn)物中的非特異片
段或殘存引物等雜質(zhì)影響。推薦使用 YJ2302/YJ0524/YJ0518 快速瓊脂糖凝膠
DNA回收試劑盒。
2.連接反應(yīng)要求
1)本試劑盒能使大多數(shù)連接反應(yīng)在25℃條件下5分鐘甚至更短時間內(nèi)達到反應(yīng)終點,
增加反應(yīng)時間反應(yīng)效率不會增強。如用快速連接反應(yīng) 1小時后,轉(zhuǎn)化效率會明顯降
低;如25℃快速連接反應(yīng)過約夜,則轉(zhuǎn)化效率會下降到75%。
2)2×Quick Ligation Reaction Buffer含有ATP,使用前置于冰上使其融化后充分混
勻,建議初次使用分裝成小管凍存,避免其反復(fù)凍融影響DNA連接效率。
3)由于T4 DNA Ligase中含有甘油,比較粘稠容易掛壁,建議使用之前短暫離心將
液體收集到管底,取樣時槍頭盡量不要深入液面太深,以免粘在槍頭上造成損失。
4)如快速連接產(chǎn)物用于電轉(zhuǎn),因快速連接反應(yīng)體系中的PEG會影響電轉(zhuǎn)效率,建議
使用離心柱將連接產(chǎn)物進行DNA純化(如YJ2301快速DNA產(chǎn)物純化試劑盒)后再
進行電轉(zhuǎn)。
3.感受態(tài)細胞要求
建議使用的熱擊轉(zhuǎn)化感受態(tài)細胞,這樣才可能得到比較理想的陽性克隆,如需
進行藍白篩選,宿主細胞必須具有正確的基因型(F′編碼的【lacZ ΔM15】)產(chǎn)生ω片
段,才能與載體DNA產(chǎn)生的LacZ α多肽結(jié)合,表現(xiàn)出β-半乳糖苷酶活性(α互補)。
pUC-T TA載體以pUC18載體為基礎(chǔ)構(gòu)建而成,因此,適合pUC18載體的感受態(tài)細胞都可以使用。推薦使用本公司YJ0807 *0感受態(tài)細胞、YJ0808 DH5α感受態(tài)細胞。
4.陽性克隆篩選
陽性DNA-片段成功插入至pUC-T Vector中后,一般情況下β-半乳糖苷酶的表達將受
到破壞,重組克隆體在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)時將顯示白
色菌落。但有時比較短的DNA-片段插入載體時,基因的讀碼框有可能正好與LacZ的
讀碼框相吻合,克隆體也會顯示藍色菌落。
5.陽性對照
為了確認(rèn)實驗操作的正確性,以及實驗試劑的有效性,我們建議使用本試劑盒中配
備的Control Insert(750 bp)進行陽性對照實驗。
使用方法
1.按以下體系配制反應(yīng)液:
成分 反應(yīng)體系 對照體系
pUC-T 1 μl 1 μl
DNA插入片段 * 0.1 -0.3 pmol --
Control Insert DNA -- 1 μl
2×Quick Ligation Reaction Buffer 5 μl 5 μl
Quick T4 DNA Ligase 1 μl 1 μl
RNase-Free Water 補足至 10 μl 補足至 10 μl
*Insert DNA的使用量:在進行克隆時,Vector DNA和Insert DNA的摩爾比一般為:1:2-1:10,
可根據(jù)實驗情況選擇適當(dāng)?shù)腣ector DNA和Insert DNA的摩爾數(shù)比。Insert DNA的使用量=nmol數(shù)×660×Insert DNA bp數(shù)。本載體1 ml(50 ng)的摩爾數(shù)約為0.03 pmol。
2.輕輕混合,短暫離心。25℃反應(yīng)5分鐘。
注意:反應(yīng)時間不要超過15分鐘,否則會降低連接效率。
3.反應(yīng)結(jié)束后,將DNA連接產(chǎn)物存放于0-4℃,而后進行轉(zhuǎn)化實驗;也可將 DNA連接
產(chǎn)物置于-20℃保存。
注意:勿進行加熱失活反應(yīng)。
4.將連接產(chǎn)物加入50 μl感受態(tài)細胞中(將感受態(tài)細胞置于冰上融化),冰浴30分鐘。
注意:用化學(xué)法轉(zhuǎn)化時,連接產(chǎn)物的加入量不要超過感受態(tài)細胞體積的10%。
5.42℃熱擊45秒鐘,迅速將離心管轉(zhuǎn)移到冰浴中,冰上靜置2-3分鐘。
6.加入450 μl無菌SOC或LB培養(yǎng)基,混勻后置于37℃搖床,150 rpm振蕩培養(yǎng)45分鐘,
使菌體復(fù)蘇。
7.根據(jù)實驗要求,取適量已轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細胞,加到含有X-Gal、IPTG和Amp的LB固體
培養(yǎng)基上,用無菌的涂布棒將細胞均勻涂開,將平板置于37℃,直至液體被吸收后,
倒置培養(yǎng),37℃培養(yǎng)12-16小時。
8.計算白、藍色菌落,挑選白色菌落,使用PCR法或酶切法鑒定插入片段是否正確。
實驗代做服務(wù):
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